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聚多巴胺涂层表面固载Se-HA的PAA/Se-HA复合支架材料的制备及性能

魏晓博, 贾一博, 王宏强, 张子悦, 赵雪, 郭姝彤, 樊晓霞

魏晓博, 贾一博, 王宏强, 等. 聚多巴胺涂层表面固载Se-HA的PAA/Se-HA复合支架材料的制备及性能[J]. 复合材料学报, 2024, 43(0): 1-12.
引用本文: 魏晓博, 贾一博, 王宏强, 等. 聚多巴胺涂层表面固载Se-HA的PAA/Se-HA复合支架材料的制备及性能[J]. 复合材料学报, 2024, 43(0): 1-12.
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WEI Xiaobo, JIA Yibo, WANG Hongqiang, et al. Preparation and properties of Se-HA modified PAA/Se-HA composite via Polydopamine bridge[J]. Acta Materiae Compositae Sinica.
Citation: WEI Xiaobo, JIA Yibo, WANG Hongqiang, et al. Preparation and properties of Se-HA modified PAA/Se-HA composite via Polydopamine bridge[J]. Acta Materiae Compositae Sinica.
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聚多巴胺涂层表面固载Se-HA的PAA/Se-HA复合支架材料的制备及性能

  • 延安大学　医学院, 延安716000

基金项目: 陕西省科技厅项目 (2022JM-547)；陕西省教育厅(23JK0721)
详细信息
    通讯作者:

    樊晓霞，博士，副教授，硕士生导师，研究方向为生物材料　E-mail: fanxiaoxia01@163.com

  • 中图分类号: TB333

Preparation and properties of Se-HA modified PAA/Se-HA composite via Polydopamine bridge

  • Yan'an Medical College, Yan'an University, Yan'an 716000, China

Funds: Natural Science Foundation of Shaanxi Provincial Department of Science and Technology (2022JM-547); Education Department of Shaanxi Provincial Government (23JK0721)

摘要

    摘要
  • 摘要:

    理想的人工骨修复材料应具有良好的生物相容性和体内促成骨作用。本文制备了聚多巴胺(PDA)辅助硒羟基磷灰石(Se-HA)修饰的聚氨基酸/硒羟基磷灰石(PAA/Se-HA)复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)。采用XRD、FT-IR、TG-DSC、SEM和力学性能表征Se-HA、PAA、PAA/Se-HA、Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的各项理化性能；通过蛋白吸附实验评价复合材料表面是否有利于细胞黏附；通过ICP-MS检测复合材料浸提液释放硒元素浓度；将材料浸提液与骨髓间充质干细胞(BMSCs)共培养，通过细胞增殖实验和细胞形态评价复合材料的细胞相容性，通过碱性磷酸酶(ALP)活性实验表征复合材料诱导细胞成骨分化能力。将PAA、PAA/Se-HA、Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入新西兰大白兔股骨髁缺损处，通过组织观察评价其体内引导成骨性能。实验结果显示，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的结构特征，Se-HA在PAA/Se-HA复合材料基体内部和表面均匀分散。该复合材料熔融温度约为210 ℃，最大分解温度约为461 ℃，弯曲强度约80 MPa，抗压强度约104 MPa，屈服强度约96 MPa。相比PAA和Se-HA复合材料，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有较好的吸附蛋白能力，有利于细胞黏附。该复合材料浸提液与BMSCs培养3天后，细胞增殖明显，表现出良好的细胞相容性；与BMSCs培养7天后，相比PAA/Se-HA复合材料，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料表现出较好的诱导细胞成骨分化的能力。该复合材料植入新西兰大白兔股骨髁缺损6周后，能够引导新骨生成，与新骨紧密键合。结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有良好的力学性能和热稳定性能，能够促进BMSCs体外增殖并诱导其成骨分化，引导体内成骨，在骨组织工程领域具有一定的应用前景。

     

    Abstract:

    The ideal artificial bone repair materials should possess good in vitro biocompatibility and in vivo osteogenesis. In this study, Poly (amino acid)/Selenium doped Hydroxyapatite (PAA/Se-HA) composite was prepared, followed by coating of Se-HA via Polydopamine (PDA) bridge for constructing Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite. The physical and chemical properties were evaluated by X-ray diffraction (XRD), Fourier Transform Infrared Spectroscopy (FT-IR), Thermogravimetric Analysis-Differential Scanning Calorimetry (TG-DSC), Scanning Electron Microscopy (SEM) and mechanical properties. The protein adsorption experiment was evaluated for assessing whether the surface of composite was beneficial for cell adhesion. The concentration of selenium released from composites was detected by inductively coupled plasma mass spectrometry (ICP-MS). The extract of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA was prepared, and the extract prepared above was used for culturing bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs) so as to evaluate the in vitro biocompatibility of the composite through cell proliferation experiments and cell morphology observation. The property of osteogenic differentiation of BMSCs induced by samples was assessed by alkaline phosphatase activity (ALP) assay. The in vivo osteogenic properties of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite were evaluated by implantation of samples into the femoral condyle defect of New Zealand white rabbits. The result shows that the Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite exhibits both the chemical characterization of PAA and Se-HA, and the Se-HA particles can be uniformly dispersed in the matrix and the surface of PAA/Se-HA composite. The melting temperature and the maximum weight loss temperature of PAA/Se-HA30 composites were about 210 ℃ and 461 ℃, respectively. The compressive strength, bending strength and yield strength of this composite were about 104MPa, 80 MPa and 96 MPa, respectively. In comparison with PAA and PAA/Se-HA composite, Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite possesses high protein adsorption value, indicating conducive of cell adhesion. After 3 days culture of BMSCs with extract of composite, the cells show obvious proliferation, indicating good cell compatibility of composite. After 7 days culture of BMSCs with extract of composite, the Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite display great property of inducing osteogenic differentiation of BMSCs in comparison with PAA/Se-HA composite. The in vivo result possesses that the composite could guide new bone formation and formed strong bond with new bone tissue after 6 weeks implantation. In summary, Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite has good mechanical properties and thermal stability. And it could promote the proliferation and osteogenic differentiation of BMSCs in vitro, and osteogenesis in vivo, which might be a promising biomaterial in the field of bone tissue engineering.

     

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  • 骨组织缺损，即骨组织的结构遭到破坏，易由遗传、肿瘤、感染和外伤等因素引起，是临床上常见的骨科疾病[1]。小于临界尺寸骨缺损会自发愈合，创口达到6 cm以上的骨缺损通常需要植入人工骨修复材料以恢复损伤处的组织结构[2]。

    聚氨基酸 [Poly (amino acid), PAA] 是一类以肽键连接，多种氨基酸为共聚单元的天然高分子聚合物。聚氨基酸与磷灰石类复合材料作为骨组织修复支架被广泛研究，其具有良好的生物相容性、力学性能和易塑形等优点[3-5]。本课题组前期研究表明，PAA与掺杂硒(Selenium, Se)的羟基磷灰石(Hydroxyapatite, HA)复合材料(PAA/Se-HA)具有良好的热稳定性和力学性能，Se-HA掺杂含量在30 wt%时，复合材料在体内外均具有良好的生物相容性和优异的促成骨作用，但其与骨组织的键合牢固性还有待提高[6]。

    表面改性技术是一种通过物理或化学的方法改变材料表面的化学成分或组织结构以提高材料性能的一类技术[7]。聚多巴胺(polydopamine, PDA)是一种受蚌类生物启发而模拟形成的大分子，具有良好的生物相容性和可降解性能，可通过共价键或非共价键与多种材料表面形成一层紧密粘附的媒介[8]。多巴胺(dopamine, DA)氧化自聚合后可形成PDA，从而应用于多种材料表面的改性[9]。将材料浸入含有DA的碱性溶液中避光反应即可在材料表面得到PDA层[10]。聚多巴胺作为表面桥连剂可聚集钙离子而诱导物体表面活性HA的矿化和沉积[11]。

    HA是骨的主要无机物成分，人工合成HA具有良好的细胞相容性，可促进成骨细胞的黏附和增殖，已被广泛研究并应用于骨缺损的修复[12]。HA中掺杂微量元素提高其促成骨性能是优化性能的重要手段之一[13]。Se是机体必需的微量元素，机体内Se水平与骨骼健康密切相关[14]。研究表明，Se-HA可促进人脂肪来源的间充质干细胞的黏附、增殖和矿化，提高细胞的成骨分化能力[15]。硒改性的磷酸钙骨水泥可促进去卵巢大鼠骨的形成[16]。而且，Se-HA除具有较好的促成骨特性外，还具备抗癌活性[17]。

    本文利用PDA的粘性制备了一种表面修饰Se-HA的PAA/Se-HA复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)，以期提高PAA/Se-HA复合材料的促成骨性能及优化其与自身骨组织的牢固键合，为临床修复大面积骨缺损提供理论依据(实验流程如图1所示)。

    图  1  实验流程图
    Figure  1.  Experimental flowchart
    PDA—Polydopamine; PAA/Se-HA—Poly (amino acid)/Selenium doped Hydroxyapatite
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    1.   实验材料及方法

    1.1   原材料

    四水硝酸钙和聚乙二醇6000 (国药集团化学试剂有限公司)；三水磷酸铵、甲基丙烯酸甲酯和钙黄绿素(上海麦克林生化科技股份有限公司)；亚硒酸钠和戊巴比妥钠(Sigma)；4-氨基丁酸、6-氨基己酸、L-羟脯氨酸、丙氨酸(上海士锋科技有限公司)；氨水(天津市天力化学试剂有限公司)；磷酸(西陇化工股份有限公司)；无水乙醇(天津市致远化学试剂有限公司)；CCK-8试剂盒、BCA试剂盒、RIPA裂解液、蛋白抑制剂(武汉博士德生物工程有限公司)；碱性磷酸酶(ALP)检测试剂盒(上海碧云天生物技术有限公司)；瑞氏吉姆萨染液(比克曼生物科技有限公司)；地塞米松(北京博奥拓达有限公司)；β-甘油磷酸钠和抗坏血酸(北京索莱宝科技有限公司)；二甲酚橙、甲苯胺蓝、碱性品红、青霉素钠和盐酸四环素(上海阿拉丁生化科技股份有限公司)。

    1.2   材料的制备

    1.2.1   Se-HA的制备

    依据文献所述的方法合成Se-HA粉末[18]。具体方法如下：按照Ca/(P + Se)(摩尔比)为1.67配制Ca(NO3)2(0.5 M)、(NH4)3PO4(0.25 M)和Na2SeO3(0.1 M)溶液备用。将聚乙二醇加入Ca(NO3)2溶液中，磁力搅拌30 min后，用氨水调节pH至11。将(NH4)3PO4溶液和Na2SeO3溶液混合，并用氨水调节混合溶液pH至10，备用。在60℃下，将混合溶液缓慢加入Ca(NO3)2溶液中，持续搅拌3 h使其反应完全。反应完全后，室温静置陈化24 h。样品用去离子水和无水乙醇分别洗涤3次，60℃下干燥过夜。将干燥后的样品放入马弗炉中以5℃/min升温速率升温至700~1200℃煅烧，保温3 h，取出研磨、过筛，得到Se-HA粉末。

    1.2.2   PAA/Se-HA复合材料的制备

    PAA/Se-HA复合材料采用原位熔融聚合法合成[19]。称取117.9 g 6-氨基己酸、1.78 g丙氨酸、2.62 g L-羟脯氨酸、4.12 g 4-氨基丁酸加入到三颈烧瓶中，向三颈烧瓶加入1 mL磷酸溶液和45 mL去离子水。将三颈烧瓶置于油浴锅中，调节温度至200℃，不断搅拌，使水完全蒸发。完全蒸发后，停止搅拌并将温度上升至210℃。待三颈烧瓶中的反应物处于熔融状态时，将温度升至220℃，并搅拌1.5 h。然后，向三颈烧瓶中加入30 wt%的Se-HA粉末，继续搅拌2 h，冷却至室温。为防止样品在聚合过程中发生氧化，反应始终采用氮气保护，样品最终标记为PAA/Se-HA。同样方法制备纯PAA聚合物。

    1.2.3   Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的制备

    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料依据文献所述制备[20]。以10 M Tris-HCl溶液为溶剂配制2 mg/mL的多巴胺Tris溶液。将PAA/Se-HA复合材料浸入多巴胺溶液中，避光磁力搅拌24 h，然后用去离子水反复冲洗除去未聚合的多巴胺。样品60℃真空干燥8 h，备用。将2 g Se-HA粉末溶于10 mL 磷酸盐缓冲盐(PBS，0.001 M，pH=6.8)中，配制质量浓度为20 wt%的Se-HA溶液。将多巴胺改性后的PDA@PAA/Se-HA复合材料置于Se-HA溶液中，低速搅拌24 h。然后，用37℃真空干燥箱充分干燥聚多巴胺辅助Se-HA修饰的PAA/Se-HA复合材料，得到样品Se-HA@PDA@PAA/Se-HA。

    1.2.4   复合材料的表征

    采用X-射线衍射(XRD，日本理学 Ultima IV)分析材料晶型结构，扫描范围为10 ~ 80°，扫描速度为10 °/min；采用傅里叶红外光谱(FT-IR，日本岛津IRTracer 100)分析材料的官能团组成，测试范围为400 ~ 4000 cm−1；采用同步热分析(TG-DSC, 瑞士-Mettler Toledo)在氮气氛围，加热速率为10℃/min条件下表征样品的热稳定性；采用扫描电子显微镜(SEM，美国FEI Quanta 250 FEG)对材料表面形貌进行表征；采用Reger30-50型万能力学试验机以5 mm/min的速度测试样品的力学性能，弯曲强度测试样品尺寸为4×10×50 mm3，抗压强度测试尺寸为10×10×15 mm3。

    1.2.5   蛋白吸附实验

    机体活细胞难以与植入体内的生物材料直接接触发生作用，但其易黏附在生物材料表面吸附的细胞外基质蛋白上。细胞通过蛋白质层的介导而附着、黏附进而铺展到生物材料表面，因此材料体外蛋白吸附行为至关重要[21]。本实验以人体血液中含量最丰富的白蛋白为模型，探究样品的蛋白吸附能力。将样品置于离心管中，加入1 mg/mL的牛血清白蛋白(BSA)溶液，在37℃摇床下吸附24 h。吸取上清液，采用BCA试剂盒在波长为562 nm处测试上清液中蛋白含量，评估样品吸附蛋白后溶液中残余蛋白的剂量。

    1.2.6   材料浸提液的制备

    将复合材料放入烘箱中60℃干燥12 h，环氧乙烷灭菌。根据GB/T 16886.12[22]，称取适量样品于无菌离心管中，将样品以200 mg/mL的标准加入含有1% 青霉素-链霉素溶液的MEM完全培养基中，置于细胞培养箱(37℃，5% CO2)浸提24 ± 2 h。将上清液通过0.22 μm滤膜后得到无菌浸提液。然后将无菌浸提液稀释至1 mg/mL，按照溶液体积加入10%(v/v)胎牛血清(FBS)，4℃冷藏备用。通过；采用电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS, 美国Agilent 7800)表征样品浸提液中Se离子的浓度。

    1.2.7   复合材料的细胞相容性检测

    小鼠骨髓间充质干细胞(Bone marrow mesenchymal stem cells，BMSCs，武汉普诺赛生命科技有限公司)在MEM完全培养基(含1%青霉素-链霉素，10% FBS)中复苏和传代，在细胞培养箱(5%CO2，37℃)中培养，取生长至对数期细胞用于实验。

    (1) CCK-8检测细胞增殖

    使用CCK-8法检测BMSCs在复合材料浸提液中的增殖能力，评估复合材料的生物相容性。将生长至对数期的BMSCs消化离心得到细胞悬液，以2×103个/孔接种至96孔板。细胞贴壁后，用含有样品浸提液的完全培养基代替旧培养基，并孵育1、2和3天。每个孵育期结束时，在避光条件下，将10 μL CCK-8溶液添加到96孔板中，培养箱中孵育2 h后，利用连续波长酶标仪(Molecular Devices，SPECTRA MAX 190)读取450 nm波长下的吸光度(OD值)。完全培养基为空白对照，完全培养基培养的细胞组作为对照组。

    (2)瑞氏吉姆萨染色观察细胞形态

    将上述96孔板中的培养基倒掉，用PBS清洗2次后，多聚甲醛固定20 min。固定结束后，用PBS洗去残留的多聚甲醛。然后用瑞氏吉姆萨染液染色10 min。随后，用蒸馏水洗去多余的染料，采用倒置显微镜(日本尼康，Ti2-N-ND-1)观察并拍照。

    1.2.8   复合材料的ALP活性检测

    成骨诱导培养液(Induce)是含有抗坏血酸(100 nM)、β-甘油磷酸钠(10 mM)和地塞米松(10 nM)的MEM完全培养基。

    将生长至对数期的BMSCs消化离心得到细胞悬液，以8×103个/孔接种至12孔板。24 h后，用含有成骨诱导液和样品浸提液的培养基代替旧培养基，每2 d更换一次。7 d后，用PBS漂洗细胞，用含有蛋白抑制剂的RIPA裂解液裂解细胞。收集裂解细胞充分震荡，离心，取上清液。通过Bradford蛋白测定法(BCA)测定蛋白浓度。根据ALP检测试剂盒说明书，将蛋白、检测缓冲液和显色底物混合到96孔板，37℃孵育10 min，利用连续波长酶标仪读取405 nm波长下OD值，将其与蛋白浓度做归一化处理，即ALP活性。

    1.2.9   复合材料的体内成骨性能

    选择体重约3 kg的雄性新西兰大白兔进行体内实验。实验样品采用环氧乙烷灭菌(如图2(a)所示)。本实验得到成都达硕实验动物有限公司实验动物伦理委员会的批准(编号：DOSSYLL20221025001)。

    在兔两侧股骨髁建立骨缺损模型。将戊巴比妥钠按照30 mg/kg的剂量从耳缘静脉注射进行麻醉。麻醉后，对股骨髁部位进行去毛和消毒处理，行股骨髁外侧纵行切口，暴露出股骨髁。在股骨髁松质骨区域钻取φ 6 mm×7 mm的骨洞(如图2(b)所示)，将灭菌后的材料放入骨洞(如图2(c)所示)，逐层缝合。术后分笼喂养，自由饮食。术后3天内按照40 mg/kg的剂量肌肉注射青霉素钠，预防伤口感染。术后2周、4周和6周分别静脉注射钙黄绿素、二甲酚橙和盐酸四环素(具体注射参数如表1所示)。

    图  2  (a) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料光学照片、(b)股骨髁缺损模型、(c) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入形态
    Figure  2.  (a) The optical photos of Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite, (b) the model of femoral condylar defect and (c) the implant form of Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite
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    术后第8周处死上述实验动物，切取样品及周围组织。将样本放入甲醛溶液中浸泡1周进行固定。然后依次放入70%、75%、80%、85%、90%、95%、100%和100%的梯度乙醇溶液中进行脱水处理。脱水处理结束后，进行切片，一部分切片用1%甲苯胺蓝和0.3%碱性品红分别染色后，封片，用倒置显微镜观察组织形态。另外一部分未染色的切片用荧光倒置显微镜观察荧光标记物沉积情况。

    表  1  荧光剂的注射参数
    Table  1.  Injection parameters of the fluorescent agent
    CalceinXylenol orangeTetracycline hydrochloride
    Solvent2% NaHCO31% NaHCO3Normal saline
    Concentration5 mg/mL50 mg/mL10 mg/mL
    pH6-86-86-8
    Dosage2 mL/kg2 mL/kg2 mL/kg
    Injection time2 nd week4 th week6 th week
    ColorGreenRedYellow
    Notes: 2 nd-Second; 4 th-Forth; 6 th-Sixth.
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    2.   结果与讨论

    2.1   复合材料的结构和结晶性能表征

    图3(a)为Se-HA、PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的FT-IR图谱。由图可知，在PAA中，1536 cm−1和3294 cm−1处为N-H弯曲振动吸收峰，1632 cm−1处为羰基(C=O)拉伸振动吸收峰，2861 cm−1和2933 cm−1处为C—H键的伸缩振动峰。这些特征吸收峰表明合成的PAA具有酰胺结构。在Se-HA中，1083 cm−1和1019 cm−1处为磷酸基不对称的伸缩振动，600 cm−1处为O-P-O不对称弯曲振动吸收峰，1648 cm−1处为O-H弯曲振动峰，767 cm−1处为O-Se-O特征吸收峰。在PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料中，上述特征吸收峰的强度略有变化，但并未出现新的吸收峰，这表明复合材料中并未形成其他物质。由XRD和FT-IR结果可得出Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的化学属性，其由PAA和Se-HA共同组成的。

    图  3  Se-HA、PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的FT-IR(a)和XRD(b)图谱
    Figure  3.  The FT-IR (a) and XRD (b) patterns of Se-HA, PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite
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    图3(b)为Se-HA、PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的XRD图谱。2θ = 20°和2θ = 24°是PAA的特征衍射峰。Se-HA在(002)、(210)、(211)、(300)、(310)、(202)等处对应PDF 09-0423标准光谱[23,24]。在PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA中均存在PAA和Se-HA的特征衍射峰，未出现新的峰，说明这两种复合材料均由PAA和Se-HA组成，未形成新的物质。

    2.2   复合材料的热稳定性

    图4是PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的TG(a)和DSC(b)曲线。由图4(a)可知，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的最大分解温度和最终剩余质量分别约为461℃和35.55%。Se-HA在PAA中的添加明显提高了复合材料的最大分解温度和最终剩余质量，表面Se-HA修饰的复合材料相比未修饰的复合材料最大分解温度和最终剩余

    质量变化较小。Se-HA在PAA中的掺杂可能会限制PAA聚合物链的运动，阻碍其从固态到气态的转化，因此增加Se-HA在PAA中的掺杂能够提高材料的最大分解温度[25]。由图4(b)可知，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的熔融温度约为210℃，相比PAA/Se-HA复合材料有所增大， PAA的熔融温度约为207℃。Se-HA在PAA中的均匀掺杂提高了复合材料的熔融温度，推测可能是Se-HA的掺杂起到异相成核作用[26]。

    图  4  PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的TG(a)和DSC(b)升温曲线
    Figure  4.  TG curves(a) and DSC heating curves(b) of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composites
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    2.3   复合材料的微观形貌

    图5为Se-HA、PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的SEM图像。由图可知，合成的Se-HA颗粒为大小均匀的纳米结构(约100 nm)。图5(b)显示PAA的表面几乎是光滑的，没有颗粒物质沉积。图5(c)显示PAA/Se-HA30复合材料表面粗糙，有颗粒物质沉积，无明显团聚，表明Se-HA可均匀分散在PAA基体中。图5(d)显示，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料表面粗糙，Se-HA可较为均匀的分散在PAA/Se-HA复合材料表面，这可能有利于细胞的黏附[27]。

    图  5  (a) Se-HA，(b) PAA，(c) PAA/Se-HA和(d) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的表面形貌(比例尺：10 μm)
    Figure  5.  Surface morphologies of (a) Se-HA, (b) PAA and (c) PAA/Se-HA composite and (d) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite (scale:10μm)
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    表2是PAA，PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的力学性能。由表可知， Se-HA在PAA中的均匀掺杂明显提高了PAA/Se-HA复合材料的抗压强度和屈服强度，但弯曲强度有所下降；推测可能是聚合物中无机相的掺杂使材料刚性和脆性均增大，弯曲时材料中的亚微裂纹影响了弯曲强度，但压缩有利于裂纹的闭合，从而使复合材料的承重力增大。表面Se-HA修饰的PAA/Se-HA复合材料相比无表面修饰的复合材料力学性能均有所降低，推测可能是样品浸入多巴胺溶液表面改性过程中，溶液渗入样品亚微裂纹中使样品聚合物链有部分断裂。人体皮质骨抗压强度为50-140 MPa，弯曲强度为80-100 MPa[28]，这表明本文所述的Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有良好的生物力学性能，能够满足骨修复的力学需求。

    表  2  PAA，PAA/Se-HA 和 Se-HA@PDA@PAA/Se-HA 复合材料的力学性能
    Table  2.  Mechanical properties of PAA，PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composites
    Samples Bending strength/MPa Compressive strength/MPa Yield strength/MPa
    PAA 89.64±0.25 92.34±0.88 83.74±0.92
    PAA/Se-HA 85.34±0.69 104.25±0.79 98.67±0.98
    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA 80.28±0.44 103.81±0.25 96.36±0.83
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    2.4   复合材料的力学性能

    2.5   复合材料表面生物活性表征

    图6为PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料吸附蛋白后溶液中残余蛋白含量。结果显示，PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料组未被吸附的蛋白量明显少于PAA组，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料组未被吸附的蛋白量少于PAA/Se-HA复合材料组，表明Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料组比PAA/Se-HA复合材料组吸附蛋白量更大，证明多巴胺辅助Se-HA修饰的PAA/Se-HA复合材料具有更好的表面生物活性，有利于细胞黏附。

    图  6  PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料吸附蛋白后溶液中残余蛋白含量(*p<0.05；**p<0.01，n=5)
    Figure  6.  Residual proteins in the solution after protein adsorption experiment of PAA, PAA/Se-HA composite and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite(*p<0.05；**p<0.01，n=5)
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    2.6   复合材料的细胞相容性

    通过CCK-8法检测PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液与BMSCs共培养1、2和3天的OD值，结果如图7所示。图8为样品浸提液与BMSCs共培养 1、2和3天后的瑞氏吉姆萨染色显微镜观察结果。由图7可知，随着培养时间的增加，每组样品OD值均有所增加。细胞培养三天后，PAA/Se-HA组和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA组OD值明显高于对照组，说明这两组细胞增殖明显。结果表明，Se-HA在PAA中的掺杂对BMSCs增殖具有促进作用，表面吸附Se-HA后，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA组的促BMSCs增殖作用最为明显。由图8可知，BMSCs骨架呈蓝紫色，细胞形态正常，呈扁平纺锤形。随着时间的增长，细胞呈旋涡式生长。图7和图8结果共同表明，Se-HA在PAA中的掺杂和在PAA/Se-HA复合材料表面的修饰对BMSCs无毒性，可促进细胞的增殖。

    图  7  CCK-8法检测样品浸提液与BMSCs共培养24、48和72 h的OD值(**** P<0.0001)
    Figure  7.  The OD values of proliferation of BMSCs cultured in extracts of samples for 24 h, 48 h and 72 h using CCK-8 assay (**** P<0.0001)
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    图  8  PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液与BMSCs共培养24、48和72小时后的细胞形态(比例尺：50 μm)
    Figure  8.  The morphology of BMSCs cultured with the extracts of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite for 24 h, 48 h and 72 h (scale:50μm)
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    表3为ICP-MS检测的PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液中Se元素含量。高浓度的Se会对细胞产生毒性作用，通过测试复合材料浸提液中Se元素的浓度可评估该材料是否因Se的掺杂影响BMSCs的活力。表3显示，PAA/Se-HA组释放的Se元素浓度为184.04 μg/L，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA组释放的Se元素浓度为564.55 μg/L。结合图7细胞增殖结果共同表明，本实验中Se-HA在PAA/Se-HA内部的掺杂和表面的覆盖均对细胞无毒，且能促进细胞增殖。

    表  3  PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液中Se元素含量
    Table  3.  The Se concentration from extract of PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite
    Samples The theoretical doping of Se/% The actual release of Se/(μg·L−1)
    PAA/Se-HA 0.9 184.04
    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA —— 564.55
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    2.7   ALP活性

    ALP是评价成骨细胞早期成骨分化的标志物[29]，可用于评价材料诱导成骨细胞成骨分化的能力。图9是BMSCs在含有成骨诱导液和样品浸提液的培养基中培养7天的ALP活性。由图可知，ALP活性按大小排序为Se-HA@PDA@PAA/Se-HA组> PAA/Se-HA组>PAA组>Induce>Control，即PAA/Se-HA复合材料ALP活性高于PAA，表面覆盖Se-HA的复合材料相比未覆盖Se-HA的复合材料的ALP活性更高，表明PAA/Se-HA复合材料相比PAA具有更好的诱导细胞成骨分化的能力，表面Se-HA的覆盖使PAA/Se-HA复合材料促细胞成骨分化能力更佳，证实其具有优异的诱导细胞成骨分化性能。该结果与表面生物活性表征中蛋白吸附实验结果一致，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料吸附蛋白能力最佳，具有较好的表面活性，该结果表明其表面有利于细胞的黏附；其浸提液与BMSCs共培养表现出较高的ALP活性，表明该复合材料能够较好的诱导成骨细胞成骨分化。

    图  9  BMSCs与PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液(含成骨诱导液)共培养7天后的ALP活性(**** P<0.0001)
    Figure  9.  The ALP activity of BMSCs cultured with the extracts of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite and osteogenic induction solution for 7 days(**** P<0.0001
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    2.8   复合材料体内成骨性能

    图10是PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损8周后的碱性品红和甲苯胺蓝染色结果。由图可知，所有样品植入骨缺损后均可与新形成的骨组织直接连接，无软组织包裹，骨细胞形态正常。但是，PAA和PAA/Se-HA复合材料植入骨缺损后经过脱水处理的样品与新骨有分离现象，说明植入物与新骨的键合紧密性差。Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入骨缺损后经过脱水处理的样品与新骨仍然紧密结合，说明植入物与新骨具有较好的键合，不易松动。结果表明，PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料均能够引导骨再生，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复

    图  10  (a/d) PAA、(b/e) PAA/Se-HA和(c/f) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损8周后的(a/b/c)碱性品红和(d/e/f)甲苯胺蓝染色结果(标尺：100 μm)
    Figure  10.  The histological observation of (a/b/c) basic fuchsin and (d/e/f) toluidine blue staining after implantation of (a/d) PAA, (b/e) PAA/Se-HA and (c/f) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite into the femoral condyle for 8 weeks (scale:100 μm)
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    合材料植入机体后与新骨的键合更加紧密，说明其与骨细胞的黏附更好，该结果与蛋白吸附实验结果一致，说明Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料能够更好的与细胞黏附。

    荧光标记法是一种追踪骨矿化沉积的常用方法，可用于新骨的生长方向和形成定位的研究，选择不同时间点注射不同荧光标志物可追踪新骨形成情况[30]。图11是PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损部位8周后的荧光标记结果。由图可知，绿色荧光 (2 W)、红色荧光(4 W)和黄色荧光(6 W)均有显示，说明样品植入后2 W有新骨的形成。黄色荧光的密度最大，且其与样品直接接触，说明样品引导大量的新骨形成发生于6 W左右。

    图  11  (a) PAA、(b) PAA/Se-HA和(c) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损部位8周后的荧光标记结果(标尺：50 μm)
    Figure  11.  The microscopic fluorescence observation after implantation of (a) PAA, (b) PAA/Se-HA and (c)Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite into the femoral condyles for 8 weeks (scale:50 μm)
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    3.   结 论

    人工骨修复材料是骨组织缺损修复的替代材料，理想的人工骨修复材料应具有良好的生物相容性和体内促成骨作用。聚多巴胺(PDA)是由多巴胺单体自聚合形成的大分子聚合物，具有良好的粘附性。本文将Se-HA通过PDA辅助粘附于含30% Se-HA的PAA/Se-HA复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)表面，提高PAA/Se-HA复合材料的促成骨性能。主要结论如下：

    (1) FT-IR和XRD结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的化学属性，其由PAA和Se-HA共同组成。SEM结果表明，Se-HA可均匀的分散在PAA/Se-HA复合材料内部和表面。

    (2)热稳定性和力学性能结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的熔融温度约为210℃，最大分解温度为约为461℃，分解后最终剩余质量为35.55%。Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的弯曲强度约80 MPa，抗压强度约104 MPa，屈服强度约96 MPa。

    (3)蛋白吸附实验结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料相比PAA/Se-HA复合材料蛋白吸附量更大，证明多巴胺辅助Se-HA修饰的PAA/Se-HA复合材料具有较好的表面生物活性，该结果表明其表面有利于细胞黏附。

    (4) PAA/Se-HA复合材料浸提液释放的Se元素浓度为184.04 μg/L，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液释放的Se元素浓度为564.55 μg/L。PAA/Se-HA复合材料浸提液能够促进BMSCs的增殖，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料促BMSCs增殖作用更佳，两组复合材料浸提液中BMSCs形态正常，呈扁平纺锤形；随着时间的增长，细胞呈旋涡式生长。该结果共同表明，Se-HA在PAA中的掺杂和在PAA/Se-HA复合材料表面的覆盖对BMSCs无毒性，可明显促进细胞的增殖。

    (5)碱性磷酸酶(ALP)活性实验结果表明，PAA/Se-HA复合材料ALP活性高于PAA，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料相比PAA/Se-HA复合材料的ALP活性更高，表明PAA/Se-HA复合材料相比PAA具有更好的诱导细胞成骨分化的能力，表面Se-HA的修饰使PAA/Se-HA复合材料促细胞成骨分化能力更佳，证实其具有优异的诱导细胞成骨分化性能。

    (6)动物实验结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入机体后与新骨的键合牢固，与骨细胞的黏附好，该结果与蛋白吸附实验结果一致，说明Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料能够更好的与细胞黏附。样品植入骨缺损后2 w有新骨的形成，大量的新骨形成发生于6 w左右。该结果共同表明，复合材料能够引导新骨的生成。

    综上所述，将Se-HA通过PDA辅助粘附于PAA/Se-HA复合材料表面可显著提高PAA/Se-HA复合材料的促成骨性能，且能增加其与骨组织的牢固键合，有望成为骨缺损修复替代生物材料。

  • 图  1   实验流程图

    Figure  1.   Experimental flowchart

    PDA—Polydopamine; PAA/Se-HA—Poly (amino acid)/Selenium doped Hydroxyapatite

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    图  2   (a) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料光学照片、(b)股骨髁缺损模型、(c) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入形态

    Figure  2.   (a) The optical photos of Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite, (b) the model of femoral condylar defect and (c) the implant form of Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite

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    图  3   Se-HA、PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的FT-IR(a)和XRD(b)图谱

    Figure  3.   The FT-IR (a) and XRD (b) patterns of Se-HA, PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite

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    图  4   PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的TG(a)和DSC(b)升温曲线

    Figure  4.   TG curves(a) and DSC heating curves(b) of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composites

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    图  5   (a) Se-HA，(b) PAA，(c) PAA/Se-HA和(d) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的表面形貌(比例尺：10 μm)

    Figure  5.   Surface morphologies of (a) Se-HA, (b) PAA and (c) PAA/Se-HA composite and (d) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite (scale:10μm)

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    图  6   PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料吸附蛋白后溶液中残余蛋白含量(*p<0.05；**p<0.01，n=5)

    Figure  6.   Residual proteins in the solution after protein adsorption experiment of PAA, PAA/Se-HA composite and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite(*p<0.05；**p<0.01，n=5)

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    图  7   CCK-8法检测样品浸提液与BMSCs共培养24、48和72 h的OD值(**** P<0.0001)

    Figure  7.   The OD values of proliferation of BMSCs cultured in extracts of samples for 24 h, 48 h and 72 h using CCK-8 assay (**** P<0.0001)

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    图  8   PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液与BMSCs共培养24、48和72小时后的细胞形态(比例尺：50 μm)

    Figure  8.   The morphology of BMSCs cultured with the extracts of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite for 24 h, 48 h and 72 h (scale:50μm)

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    图  9   BMSCs与PAA、PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液(含成骨诱导液)共培养7天后的ALP活性(**** P<0.0001)

    Figure  9.   The ALP activity of BMSCs cultured with the extracts of PAA, PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite and osteogenic induction solution for 7 days(**** P<0.0001

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    图  10   (a/d) PAA、(b/e) PAA/Se-HA和(c/f) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损8周后的(a/b/c)碱性品红和(d/e/f)甲苯胺蓝染色结果(标尺：100 μm)

    Figure  10.   The histological observation of (a/b/c) basic fuchsin and (d/e/f) toluidine blue staining after implantation of (a/d) PAA, (b/e) PAA/Se-HA and (c/f) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite into the femoral condyle for 8 weeks (scale:100 μm)

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    图  11   (a) PAA、(b) PAA/Se-HA和(c) Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入股骨髁缺损部位8周后的荧光标记结果(标尺：50 μm)

    Figure  11.   The microscopic fluorescence observation after implantation of (a) PAA, (b) PAA/Se-HA and (c)Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite into the femoral condyles for 8 weeks (scale:50 μm)

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    表  1   荧光剂的注射参数

    Table  1   Injection parameters of the fluorescent agent

    CalceinXylenol orangeTetracycline hydrochloride
    Solvent2% NaHCO31% NaHCO3Normal saline
    Concentration5 mg/mL50 mg/mL10 mg/mL
    pH6-86-86-8
    Dosage2 mL/kg2 mL/kg2 mL/kg
    Injection time2 nd week4 th week6 th week
    ColorGreenRedYellow
    Notes: 2 nd-Second; 4 th-Forth; 6 th-Sixth.
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    表  2   PAA，PAA/Se-HA 和 Se-HA@PDA@PAA/Se-HA 复合材料的力学性能

    Table  2   Mechanical properties of PAA，PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composites

    Samples Bending strength/MPa Compressive strength/MPa Yield strength/MPa
    PAA 89.64±0.25 92.34±0.88 83.74±0.92
    PAA/Se-HA 85.34±0.69 104.25±0.79 98.67±0.98
    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA 80.28±0.44 103.81±0.25 96.36±0.83
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    表  3   PAA/Se-HA和Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料浸提液中Se元素含量

    Table  3   The Se concentration from extract of PAA/Se-HA and Se-HA@PDA@PAA/Se-HA composite

    Samples The theoretical doping of Se/% The actual release of Se/(μg·L−1)
    PAA/Se-HA 0.9 184.04
    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA —— 564.55
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    • 参考文献(30)
  • [1] 林嘉宜, 袁伟壮, 张洪武. 医用3D打印材料应用于骨缺损修复的研究进展[J]. 中国临床解剖学杂志, 2017, 35(6): 708-712.

    LIN Jiayi, YUAN Weizhuang, ZHANG Hongwu. Research progress on 3D printing medical material to repair bone defect[J]. Chinese Journal of Clinical Anatomy, 2017, 35(6): 708-712(in Chinese).
    [2] 刘嗣聪, 刘宏浩, 殷亚然. 生物可降解聚酯/生物陶瓷3D打印骨组织工程支架研究进展[J]. 复合材料学报, 2024, 41(4): 1672-1693.

    LIU Sicong, LIU Honghao, YIN Yaran. Research advances in 3D printed bone tissue engineering scaffolds based on biodegradable polyester/bioceramics[J]. Acta Materiae Compositae Sinica, 2024, 41(4): 1672-1693(in Chinese).
    [3]

    YAN L, WEI X, ZHANG Z, et al. Cobalt-doped hydroxyapatite for bone tissue engineering: Synthesis, characterization and in vitro biocompatibility of real-time extract[J]. Materials Today Communications, 2024, 38: 108554 DOI: 10.1016/j.mtcomm.2024.108554
    [4]

    FAN X, PENG H, LI H, et al. Reconstruction of calvarial bone defects using poly(amino acid)/hydroxyapatite/calcium sulfate composite[J]. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition, 2019, 30(2): 107-121. DOI: 10.1080/09205063.2018.1554833
    [5]

    FAN X, REN H, LUO X, et al. Mechanics, degradability, bioactivity, in vitro, and in vivo biocompatibility evaluation of poly(amino acid)/hydroxyapatite/calcium sulfate composite for potential load-bearing bonerepair[J]. Journal of Biomaterials Applications, 2016, 30(8): 1261-1272. DOI: 10.1177/0885328215620711
    [6]

    WEI X, ZHANG Z, WANG L, et al. Enhancing osteoblast proliferation and bone regeneration by poly (amino acid)/selenium-doped hydroxyapatite[J]. Biomedical Materials, 2024, 19(3): 035025. DOI: 10.1088/1748-605X/ad38ac
    [7] 韩健美, 夏雨祥, 程昉, 等. 聚醚胺ED900-单宁酸构建表面微结构化复合涂层及其细胞相容性的研究[J]. 复合材料学报, 2023, 40(1): 396-406.

    HAN Jianmei, XIA Yuxiang, CHENG Fang, et al. Construction of microstructured composite coatings based on polyetheramine ED900-tannic acid and cytocompatibility study[J]. Acta Materiae Compositae Sinica, 2023, 40(1): 396-406(in Chinese).
    [8] 史娟, 梁犇, 宋凤敏, 等. ZnFe2O4@聚多巴胺@Ag 纳米复合材料的制备及其抑菌性[J]. 复合材料学报, 2023, 40(12): 6775-6788.

    SHI Juan, LIANG Ben, SONG Fengmin, et al. Preparation and antibacterial properties of ZnFe2O4@polydopamine@Ag nanocomposites[J]. Acta Materiae Compositae Sinica, 2023, 40(12): 6775-6788(in Chinese).
    [9]

    COSTA J, BARATTO, M C, SPINELLI, D, et al. A novel bio-adhesive based on chitosan-polydopamine-xanthan gum for glass, cardboard and textile commodities[J]. Polymers, 2024, 16(13): 1806 DOI: 10.3390/polym16131806
    [10]

    LEE H, DELLATORE S M, MILLER W M, et al. Mussel-inspired surface chemistry for multifunctional coatings[J]. Science, 2007, 318(5849): 426-430. DOI: 10.1126/science.1147241
    [11]

    ZHOU J, GUO X, ZHENG Q, et al. Improving osteogenesis of three-dimensional porous scaffold based on mineralized recombinant human-like collagen via mussel-inspired polydopamine and effective immobilization of BMP-2-derived peptide[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 2017, 152: 124-132. DOI: 10.1016/j.colsurfb.2016.12.041
    [12] 杨宁文, 何星. 羟基磷灰石/氧化石墨烯复合支架在骨缺损修复治疗中的研究进展[J]. 复合材料学报, 2024, 41(1): 38-49.

    YANG Ningwen, HE Xin. Research progress on hydroxyapatite/grapheme oxide composite scaffolds in the treatment of bone defect repair[J]. Acta Materiae Compositae Sinica, 2024, 41(1): 38-49(in Chinese).
    [13] 曹国定, 裴豫琦, 刘军, 等. 骨缺损修复材料的研究进展[J]. 中国骨伤, 2021, 34(4): 382-388.

    CAO Guoding, PEI Yuqi, LIU Jun, et al. Research progress on bone defect repair materials[J]. China Journal of Orthopaedics and Traumatology, 2021, 34(4): 382-388 (in Chinese).
    [14]

    STUSS M, MICHALSKA-KASICZAK M, SEWERYNEK E. The role of selenium in thyroid gland pathophysiology[J]. Endokrynologia Polska, 2017, 68(4): 440-465. DOI: 10.5603/EP.2017.0051
    [15]

    ZAKHIREH S, ADIBKIA K, BEYGI-KHOSROWSHAHI Y, et al. Osteogenesis promotion of selenium-doped hydroxyapatite for application as bone scaffold[J]. Biological Trace Element Research, 2021, 199(5): 1802-1811. DOI: 10.1007/s12011-020-02309-2
    [16]

    LI T L, TAO Z S, Wu X J, et al. Selenium-modified calcium phosphate cement can accelerate bone regeneration of osteoporotic bone defect[J]. Journal of Bone and Mineral Metabolism, 2021, 39(6): 934-943. DOI: 10.1007/s00774-021-01240-3
    [17]

    ZAKHIREH S, ADIBKIA K, BEYGI-KHOSROWSHAHI Y, et al. Osteogenesis Promotion of Selenium-Doped Hydroxyapatite for Application as Bone Scaffold[J]. Biological Trace Element Research, 2021, 199(5): 1802-1811. DOI: 10.1007/s12011-020-02309-2
    [18]

    WEI L, PANG D, HE L et al. Crystal structure analysis of selenium-doped hydroxyapatite samples and their thermal stability[J]. Ceramics International, 2017, 18: 16141-16148.
    [19]

    LI H, YAN Y, WEI J, et al. Bone substitute biomedical material of multi-(amino acid) copolymer: in vitro degradation and biocompatibility[J]. Journal of Materials Science-Materials in Medicine, 2011, 22(11): 2555-2563. DOI: 10.1007/s10856-011-4439-8
    [20] 刘勇, 张云庆, 邬丹莲, 等. 丝素蛋白/羟基磷灰石/聚多巴胺/BMP-2多孔支架的构建及促进BMSCs成骨分化的研究[J]. 中国骨科临床与基础研究杂志, 2019, 11(4): 235-242. DOI: 10.3969/j.issn.1674-666X.2019.04.007

    LIU Yong, ZHANG Yunqing, WU Danlian, et al. Construction of silk fibroin/hydroxyapatite/poly dopamine/BMP-2 porous scaffold and its effects of enhancing osteogenetic differentiation of BMSCs[J]. Chinese Orthopaedic Journal of Clinical and Basic Research, 2019, 11(4): 235-242(in Chinese). DOI: 10.3969/j.issn.1674-666X.2019.04.007
    [21] 杨晓玲, 曹俊杰, 杨建, 等. C/C复合材料表面聚多巴胺涂层的制备及性能研究[J]. 军事医学, 2016, 40(12): 941-945+963.

    YANG Xiaolin, CAO Junjie, YANG Jian, et al. Preparation and properties of polydopamine coating on the surface of C/C composites[J]. Military Medical Sciences, 2016, 40(12): 941-945+963(in Chinese).
    [22] 中国国家标准化管理委员会. 医疗器械生物学评价第12部分: 样品制备与参照材料: GB/T 16886. 12-2017 [S]. 北京: 中国标准出版社, 2017.

    Standardization Administration of the People’s Republic of China. Biological evaluation of medical devices-Part 12: Sample preparation and reference materials: GB/T 16886. 12-2017 [S]. Beijing: China Standards Press, 2017 (in Chinese)
    [23]

    LUO H L, XIE J, XIONG L L, et al. Engineering photoluminescent and magnetic lamellar hydroxyapatite by facile one-step Se/Gd dual-doping[J]. Journal of Materials Chemistry B, 2018, 6(21): 3515-3521. DOI: 10.1039/C8TB00658J
    [24]

    VAN H N, TAM P D, KIEN N D T, et al. Enhancing the luminescence of Eu3+/Eu2+ ion-doped hydroxyapatite by fluoridation and thermal annealing[J]. Luminescence, 2017, 32(5): 817-823. DOI: 10.1002/bio.3257
    [25]

    FAN X, YAN Y. Poly(amino acid)/ZnO nanoparticles nanocomposites with enhanced thermal, mechanical, and antibacterial properties[J]. Polymer Bulletin, 2020, 77(5): 2325-2343. DOI: 10.1007/s00289-019-02860-6
    [26]

    FAN X, ZHU S, WEI X, et al. Preparation and properties of antibacterial biomaterial PAA/TiO2/Ag[J]. Polymer Composites, 2023, 44(9): 5769-5780. DOI: 10.1002/pc.27525
    [27]

    LI H, GONG M, YANG A, et al. Degradable biocomposite of nano calcium-deficient hydroxyapatite-multi (amino acid) copolymer[J]. International Journal of Nanomedicine, 2012, 7: 1287-1295.
    [28]

    WEI J, LI Y B. Tissue engineering scaffold of nano-apatite crystals and polyamide composite[J]. European Polymer Journal, 2004, 40(3): 509-515. DOI: 10.1016/j.eurpolymj.2003.10.028
    [29]

    WU T, CHENG N, XU C, et al. The effect of mesoporous bioglass on osteogenesis and adipogenesis of osteoporotic BMSCs[J]. Journal of Biomedical Materials Research Part A, 2016, 104(12): 3004-3014. DOI: 10.1002/jbm.a.35841
    [30] 宋亚平, 陈传耀, 温璞, 等. 三种复合型骨移植材料早期修复骨缺损的比较[J]. 中国口腔种植学杂志, 2018, 23(2): 51-56+83. DOI: 10.3969/j.issn.1007-3957.2018.02.001

    SONG Yaping, CHEN Chuanyao, WEN Pu, et al. Comparison of three kinds of composite bone graft materials in the early of bone defect repair[J]. Chinese Journal of Oral Implantology, 2018, 23(2): 51-56+83(in Chinese). DOI: 10.3969/j.issn.1007-3957.2018.02.001
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  • 目的 

    理想的人工骨修复材料应具有良好的生物相容性和体内促成骨作用。有机和无机复合材料以其生物相容性好、力学性能强、促成骨能力佳，且多数材料可降解等优点，在骨修复领域吸引了越来越多的研究。为保证复合材料的力学性能，通常复合材料中有机材料占比较高，较低的无机占比导致复合材料引导成骨的能力有限。通过表面黏附无机材料，既保证有机/无机复合材料的力学性能，还能提高无机占比，从而提高材料的促成骨性能。本文利用聚多巴胺(PDA)的黏性制备一种表面修饰Se-HA的PAA/Se-HA复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)，在确保复合材料良好的力学性能和热稳定性能条件下，提高PAA/Se-HA复合材料的促成骨性能及优化其与自身骨组织的牢固键合。

    方法 

    制备了聚多巴胺(PDA)辅助硒羟基磷灰石(Se-HA)修饰的聚氨基酸/硒羟基磷灰石(PAA/Se-HA)复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)。采用XRD、FT-IR、TG-DSC、SEM和力学性能表征Se-HA、PAA、PAA/Se-HA、Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的各项理化性能；通过蛋白吸附实验评价复合材料表面是否有利于细胞黏附；通过ICP-MS检测复合材料浸提液释放硒元素浓度；将材料浸提液与骨髓间充质干细胞(BMSCs)共培养，通过细胞增殖实验和细胞形态评价复合材料的细胞相容性，通过碱性磷酸酶(ALP)活性实验表征复合材料诱导细胞成骨分化能力。将PAA、PAA/Se-HA、Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料植入新西兰大白兔股骨髁缺损处，通过组织观察评价其体内引导成骨性能。

    结果 

    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的结构特征，Se-HA在PAA/Se-HA复合材料基体内部和表面均匀分散。该复合材料熔融温度约为210 ℃，最大分解温度约为461 ℃，弯曲强度约80MPa，抗压强度约104MPa，屈服强度约96MPa。相比PAA和Se-HA复合材料，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有较好的吸附蛋白能力，有利于细胞黏附。该复合材料浸提液与BMSCs培养3天后，细胞增殖明显，表现出良好的细胞相容性；与BMSCs培养7天后，相比PAA/Se-HA复合材料，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料表现出较好的诱导细胞成骨分化的能力。该复合材料植入新西兰大白兔股骨髁缺损6周后，能够引导新骨生成，与新骨紧密键合。

    结论 

    Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的结构特征，Se-HA在PAA基体内部和表面分布均匀，其具有良好的力学性能和热稳定性能，能够促进BMSCs体外增殖并诱导其成骨分化，引导体内成骨，在骨组织工程领域具有一定的应用前景。

    • 创新点

  • 有机/无机复合材料以其生物相容性好、力学性能强、促成骨能力佳，且多数材料可降解等优点，在骨修复领域吸引了越来越多的研究。为保证复合材料的力学性能，通常复合材料中有机材料占比较高，较低的无机占比导致复合材料引导成骨的能力有限。通过表面黏附无机材料，既保证有机/无机复合材料的力学性能，还能提高无机占比，从而提高材料的促成骨性能。

    本文利用聚多巴胺(PDA)的黏性制备了一种表面修饰Se-HA的PAA/Se-HA复合材料(Se-HA@PDA@PAA/Se-HA)，以期提高PAA/Se-HA复合材料的促成骨性能及优化其与自身骨组织的牢固键合。结果表明，Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料具有PAA和Se-HA的结构特征，且具有较好的热稳定性和力学性能。相比PAA/Se-HA复合材料，表面修饰Se-HA的PAA/Se-HA复合材料表现出较好的表面吸附蛋白能力。该复合材料浸提液与BMSCs培养3天后，细胞增殖明显，表现出良好的细胞相容性，与BMSCs培养7天后表现出较好的ALP活性，表明其具有较好的诱导细胞成骨分化能力。该复合材料植入新西兰大白兔股骨髁缺损6周后，能够引导新骨生成，相对无表面覆盖的复合材料，新制备的复合材料能更好的与新骨紧密键合。

    实验流程图

    Experimental flowchart

图(11)  /  表(3)
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出版历程
  • 收稿日期:  2024-10-10
  • 修回日期:  2024-11-13
  • 录用日期:  2024-11-23
  • 网络出版日期:  2024-12-06

目录

摘要
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  • 1.   实验材料及方法

  • 1.1   原材料

  • 1.2   材料的制备

  • 1.2.1   Se-HA的制备
  • 1.2.2   PAA/Se-HA复合材料的制备
  • 1.2.3   Se-HA@PDA@PAA/Se-HA复合材料的制备
  • 1.2.4   复合材料的表征
  • 1.2.5   蛋白吸附实验
  • 1.2.6   材料浸提液的制备
  • 1.2.7   复合材料的细胞相容性检测
  • 1.2.8   复合材料的ALP活性检测
  • 1.2.9   复合材料的体内成骨性能

  • 2.   结果与讨论

  • 2.1   复合材料的结构和结晶性能表征

  • 2.2   复合材料的热稳定性

  • 2.3   复合材料的微观形貌

  • 2.4   复合材料的力学性能

  • 2.5   复合材料表面生物活性表征

  • 2.6   复合材料的细胞相容性

  • 2.7   ALP活性

  • 2.8   复合材料体内成骨性能

  • 3.   结 论

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